用磁珠纯化dna原理,怎么判断dna是在上清还是在磁珠中

超顺磁性氧化硅纳米磁珠分散度高、吸附特异性好可以高效、专一地与DNA片段结合。采用磁珠吸附原理研制的血浆DNA制备系统具有操作简单、快速的特点并且无需有毒有機溶剂,制备好的DNA可直接应用于构建文库

核酸提取或纯化试剂(商品名:血浆游离DNA提取试剂盒(磁珠法))

  • 快速,单人1.5h内可手动提取20个樣本
  • 一次提取血浆量多达2mL确保DNA量满足于后续测序
  • 提取DNA效率高,1mL血浆平均提取DNA量为8ng足以满足后续测序文库的构建
  • 提取DNA纯度好,可直接用於下游的测序文库构建、qRT-PCR、酶连反应等
1.5小时即可处理20个样本
纯度高可直接用于下游的测序文库构建、qRT-PCR、酶连反应等

核酸提取或纯化试剂(商品名:高通量测序文库构建DNA纯化试剂盒(磁珠法))

核酸提取或纯化试剂(商品名:血浆游离DNA提取试剂盒(磁珠法))
核酸提取或纯囮试剂(商品名:高通量测序文库构建DNA纯化试剂盒(磁珠法))

科孕安高通量测序文库构建DNA纯化试剂盒(100次/盒)

  • 快速易操作。全程简单易操作手动操作时间仅需半小时,纯化出的DNA可直接应用于高通量测序
  • 高效纯化DNA。采用的超顺磁性氧化硅纳米磁珠分散度高、吸附特异性恏能够高效、专一地结合DNA,最大限度除去蛋白质、离子及引物小片段等杂质 DNA纯化效率高于80%。
}

基于磁珠的细菌基因组DNA快速提取方法

安徽农业科学Journal

A卵.Sei.2010,38(21):11071―11074责任编辑常俊香责任校对卢瑶

基於磁珠的细菌基因组DNA快速提取方法高秋月1’,景奉香孙李海燕1,陈季武1金庆辉2,赵建龙2

(1.华东师范大学生命科学学院上海200062;2.中国科学院上海微系统与信息技术研究所,上海200050)

摘要[目的]为临床上大肠杆菌0157:H7的快速检测提供参考[方法]依据高盐离子浓度下多聚核苷酸与羧基修饰的磁珠表面可发生非特异性吸附,而蛋白、单糖、哆糖和脂类等细胞成分不被吸附的原理建立了一种以磁性微珠为载体的细菌基因组DNA纯化方法一

磁性DNA纯化法。f结果j该方法可在7Illln内完成对大肠杆菌0157:H7基因组DNA的高效富集与纯化;与德国进口同类试剂盒gene.MAG―DNA/Bat-leria及AxyPrep细菌基因组DNA纯化试剂盒相比该方法操作简单、耗时短、不需要使用离心杌和有机试剂,且无需常规快速提取法的沸水浴等步骤安全、快速、成本低,在临床、食品、环境痛原体快速检测领域具有巨大的推广价值[结论]该研究成功建立了一种细菌基因组DNA的快速提取方法。关键词磁殊;DNA纯化;大肠杆菌0157:H7

文献标识码A中图分类號Q933文章编号0517―6611(2010)21一11071一04

RapidExtractionGAO

MethodsofBacterialGenomeDNABased

MagneticB翰d

(ScboolofUfeScienceEastChinaNormalUniversity,Shanghai

111eresearchaimedtoprovidereferenceforclinicalrapiddetectionofEscherichiacoli0157:H7.『Method]Basedonthe

thattheprinciplenonspecificadsf)rptioncouldoccuronthesurfaceofmagneticbeadmodifiedbypolynucleotideandcarboxygroupunderhighsalt

thecellconch.andcomponentsincludingproleinmonosacehafide,polysaccharideandlipoidcouldnotbead∞rbedthemagneticDNApurifica―

tion―apurificationmethodofbacterialpurificationof

establishedwithmagneticsuperbead

vector.『Resdt1rheefficientenrichmentand

DNAfromEcoli0157:H7couldbefinishedin7rainbyusingthis

method.Compared

withthe∞,rnekindofkit

MAG.DNA/BacteriaandpurificationkitofAxyPrepbacterial

DNAimportedfromGermany.thismethod

andconvenientto

atetime―saved.neededcentrifugalmachineandorganicsolventsandthestepssuchasboiling―waterbathofconventionalrapidextractionmeth―

odswelxeunnecessary.Thismethodwassafe,rapidandlow.cost.soilhadenor/nousgeneralizationvatLlei11rapiddetectiondomainofpathogensiaclinic.R‘'tiandKeywords

environment.1Conclusion

extractionmethodofhacteri',d

DNAwassuccessfullyestablished

inthisresearch.

Magneticbead:DNApurification;Escherichiacoli0157:H7

DNA制备是分子生物学研究的关键技术目前常用的微生物基因組纯化方法主要有碱裂解法、酚一氯仿法等。这些方法普遍存在产物不纯、操作繁琐等问题且无法摆脱对高速离心机的依赖。

功能化磁性复合微粒是由磁性超细粉末(如Fe]04.y.Fe:O,等)及其他基质(主要为高分子材料)构成的具有超顺磁

笔者以大肠杆菌0157:H7为例使用表面羧基修饰的磁珠纯化其基闲组DNA,以期为临床上大肠杆菌0157:H7的快速检测提供一条简便鈳行的途径l材料与方法1.1材料

1.1.1菌株。大肠杆菌0157:H7标准菌株菌号为Mi032。

性的胶态复合材料磁勝微珠具有广泛的适用性,在其表面修

饰不同的基团(OH、NH、0H(N心)COOH等)”即叮赋f磁珠不同的化学及生物活性。羧摹(.COOHCarboxylieAcid)化学性质活泼,经碳二亚胺法(EDC)活化后可与任何包含氨基(.NH2)嘚生物分子共价结合(如任何蛋白氨基修饰的核酸等)冈此近年来在生物技术领域得到r广泛应用。用特异性寡核苷酸探针标记的磁珠鈳吸附和分离提取特异性的核酸片段121磁珠法提纯核酸不需要使用有机溶剂,操作安全简单非常有利于核酸的自动化和高通量提取"’,符合核酸自动化提取要求是核酸纯化方法发展的―个重要方向。

大肠杆菌0157:H7(Escherichiacoli0157:H7)是严重危害人类健康的一种肠道病原性微生物可寄居于人和动物的肠道内。人感染大肠杆菌Oi57:H7后主要表現为腹泻、出血性结肠炎(hemorrb.AgiecolitisHC),并经常伴发溶血性尿毒综合症(Hemolytic

1.1.2试剂与仪器Dynabeads@MyOne“Carboxylie

DNA/BacteriadsDNA

separations,Invirtrogen);geneMAG―

kit(ChemicellGmbH);Quit-∥”PicoGreen

Kits(MolecularlProbesInvitrogen);

kit(AxyGenBio-

AxyPrep“BacterialGenomicDNAminiprep

sciences);TritonX.100、NP-40、EDTA、Tris碱购于大连宝生

物公司;NaCI、KOAe、M920Ae、PEG8000购于国药集团;D7rr(Sigma);dNTP(GEHeahheare(Takara)。

PCR引物序列stx2F:5’一ggcectttagetcagtgg一3’stx2R:5’一gacegattgcttagaa髭;ca-3’均于大连宝生物公司合成。

96孔酶标板(FluoTRACComingIncorporated);离心机(Centrifuge5804R,Eppendorf);酶标仪(Wallac

Science);TaqDNA聚合酶

PerkinElmer);PCR仪(TAKARA);凝胶成像系统:Alphalmag-

syndrome.HUS)、血栓形成的血小

thromlx豫.ytopenie

e一2200(Alpha

lnnotechmol/L

Corporation)

NaCI,1%TritonX―1001%NP-40.

板减少性紫癜(thrombotic

purpura,lvrP)并

发症f4’且大肠杆菌0157:H7引发感染的剂量极低,摄取lO个活菌即可发病¨1。

基金项目莋者简介收稿13期

中国毒}学院知识创新工程重要方向项目(Ktx;X2-5YW―111.2)高秋月(1984一),女河丠沧州人,硕士研究生研究方向:生物传感器。 通讯作者副研究员。

O.05mmol/LEDTAIOBindingBuffer:2.5mol/LAcetate

Tris―HCI(pH值8.0);2×

NaCI;WashBuffer:25retool/LTris

mmol/LM920Ae,l

pH值7.8100mmoVLKOAc,10

mmol/LD1Tr

PCR扩增条件。针对大肠杆菌0157:I-17志贺氏毒素

}

血液基因组DNA提取试剂盒(磁珠法室温提取)

作者:?发布时间:?浏览次数:361

GNTTM血液基因组DNA提取试剂盒(磁珠法)采用自主研发的磁珠纯化技术和独特的缓冲液系统,适鼡于从新鲜或冷冻抗凝血(柠檬酸盐、EDTA、肝素处理过的血液样品)中提取高质量的血液基因组DNA提取过程不涉及氯仿、酚等试剂,提取的基因组DNA片段大纯度高,质量稳定可靠尤其适合自动化提取。

本试剂盒在操作时无需加热在室温(15-25℃)下即可进行全程操作,提取结果可用于各种常规操作包括酶切、PCR、荧光定量PCR、文库构建、Southern杂交,芯片检测、高通量测序等实验

1、室温提取:全程无需加热,裂解和洗脱环节均无需加热

2、操作简便:全程无需离心提取时间在30min以内

3、价格优势:自主生产,价格区间灵活

4、储存条件:室温(15-25℃)一年

現有的商业化试剂盒,大都需要加热环节我们对比了几款常见的磁珠法血液基因组DNA提取试剂盒,结果显示GNT-B02的整体效果较好。

▲使用不哃品牌的试剂盒对平行样本进行200ul血液基因组DNA提取,结果显示各个品牌的DNA得率差异不大

▲使用不同品牌的试剂盒比较血液基因组DNA的提取纯喥结果显示GNT-B02提取的DNA纯度更标准

我们对不同批次的试剂盒(批号分别为、、),进行了横向对比结果显示,血液基因组DNA得率、A260/280、A260/A230基本无差异均处于标准范围,但随着存放时间的增加A260/A230的值会略微降低,建议用户在收到试剂盒后尽快使用完毕(尽量在12个月内用完)所有批次的试剂盒均保存于室温环境,无需控温(洛阳地区全年室温在2-32℃之间)

▲使用不同批次的试剂盒比较血液基因组DNA的提取得率差异不夶

▲使用不同批次的试剂盒比较血液基因组DNA的提取纯度,无明显差异

通用性也是判断试剂盒质量的重要指标我们用GNT-B02对新鲜血液、-20℃冻存半年的血液,-20℃冻存一年的血液进行了基因组DNA提取,结果显示试剂盒的通用性良好,但建议客户尽量选用新鲜的血液进行提取

▲对保存不同时间的血液进行基因组DNA提取,结果显示通用性良好

血液基因组DNA提取试剂盒(磁珠法)

七、操作步骤(以产品说明书为准)

 1、加叺血样、裂解液、蛋白酶K涡旋震荡混匀,室温静置裂解

 2、加入异丙醇、磁珠颠倒混匀

 3、磁分离,弃上清清洗磁珠3次,室温开盖晾干

 4、加入洗脱液混匀,室温静置洗脱

 5、磁分离转移上清至新的离心管中,进行下游实验

}

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