ms培养基成分主要包括（ ）、（ ）,此外常常添加（ ）.植物组织培养那课的_百度作业帮
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ms培养基成分主要包括（ ）、（ ）,此外常常添加（ ）.植物组织培养那课的
ms培养基成分主要包括（ ）、（ ）,此外常常添加（ ）.植物组织培养那课的
主要成分包括大量元素和微量元素,还常常添加植物生长调节物质.猪笼草组培文摘
猪笼草组培文摘
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猪笼草组培快繁技术
Tissue Culture and Fast Propagation in
Nepenthes Alata&&
&&经济林研究&&2005年
第23卷 第04期
摘　　要:猪笼草具节茎段经消毒处理后接种到MS+6-BA3.0
mg/L+NAA0.1 mg/L+Vc50 mg/L的培养基中,诱导出侧芽;切取侧芽带1～2个节的茎段接入1/8MS+6-BA0.8
mg/L+NAA0.1 mg/L培养基中,诱导愈伤组织和芽并继代培养,扩繁2.5～3.0倍.继代3～5次后取高度大于3
cm具2个节的芽,切顶芽在1/8MS+6-BA0.05 mg/L+IAA0.1
mg/L芽增殖培养基中培养.具节茎段则先在1/8MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.1
mg/L培养基中培养,待其抽出侧芽后再转入芽增殖培养基中培养,繁殖倍数可扩增1.5倍.将继代培养芽丛中具2个节的芽接到1/4MS+NAA0.2
mg/L+IAA0.5 mg/L+活性炭500 mg/L培养基中,30 d生根率可达75%;炼苗20
d左右移栽,成活率85%以上.
猪笼草组培快繁技术的研究
TISSUE CULTURE AND RAPID PROPAGATION OF
NEPENTHES MIRABILIS&&
&&西南农业大学学报&&2003年
第25卷 第01期
以猪笼草(Nepenthes
mirabilis)腋芽为试材,通过组织培养进行快繁研究,结果表明,无菌繁殖体系的建立以1/2
MS+6-BA1.0(mg/L)+NAA0.05 +LH(水解乳蛋白)100
为最佳;继代芽的增殖以MS+6-BA1.5+Ad2.0+NAA0.1+30～40 g/L 蔗糖最好;生根培养用1/2 MS
+NAA1～2+IBA0.5～1+H3BO3 50～100 mg/L最好.
猪笼草离体培养及植株再生研究
《西南师范大学学报：自然科学版》2008年第33卷第3期
摘　　要:以猪笼草的幼嫩茎段为外植体进行离体组织培养及植株再生，研究结果表明：以液体培养基1／2MS＋6-BA1．0mg／I．＋NAA0．1mg／L对芽的初始诱导以及固体培养基1／2MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．1mg／L对不定芽的增殖效果最好，增殖率达419％；生根培养基以1／4MS＋IBA0．5mg／L＋活性碳（0．01％）为最佳，生根率可达100％．
猪笼草的组织培养和快速繁殖
《植物生理学通讯》2003年第5期
摘　　要:1 植物名称猪笼草(Nepenthes&hybridus cv.
Dyeriana). 　　2 材料类别顶芽、腋芽. 　　3 培养条件基本培养基为MS.丛生芽诱导及继代培养基:(1)MS+6-BA
2.0 mg*L-1(单位下同)+NAA 0.1; (2)MS+6-BA 1.0+NAA 0.05;(3) 1/2MS+6-BA
2.0+NAA 0.1;(4)1/2MS+6-BA 1.0+NAA 0.05;(5)1/2MS+6-BA 0.5+NAA
0.05.生根培养基:(6)1/2MS;(7)1/2MS+IBA 0.5+NAA 0.5;(8)1/2MS+6-BA 0.1+NAA
0.5;(9)1/2MS+6-BA 0.1+NAA 0.5+0.05%活性炭.以上培养基均加入0.7%琼脂粉、3%蔗糖,pH
5.8.培养温度25～28℃,光照度1 500～2 000 lx,光照12 h*d-1. 　　……
猪笼草组织培养育苗技术的研究
《广东园林》2005年第2期
摘　　要:本试验研究了本地野生种(Nepenihes
nlirabitis)带芽茎段的组织培养及植株再生，筛选出最佳培养基：(1)启动培养：MS+6BA1．0-2．0mg·L-1+NAA0．1mg·L-1(以下单位相同)+蔗糖3%+椰汁10%；(2)增殖培养：1／2MS+6BA1+NAA0．1+蔗糖3％(3)生根培养基：1／2MS+IBA0.5+NAA1．5+蔗糖3％．
猪笼草的快速繁殖技术研究
《热带林业》2003年第31卷第2期
摘　　要:进行了猪笼草顶端幼嫩茎段离体培养的研究，试验表明：对外植体消毒效果较好的杀菌剂是12％双氧水+0.1％升汞；在培养基中加入0.1％活性炭可有效地防止猪笼草的外植体发生褐变；丛生芽连续在1／4MS中培养的材料褐化较轻；BA0.5mg／L+NAA0、lmg／L的激素配比对芽的增殖效果较好；1／4MS+NAA0.5～1.0mg／L诱导生根、促进壮苗效果较佳；试管苗移栽在水苔上，成活率可达80％
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18:52:45&&&来源：&&&评论：&&
[请教：用封口膜封培养皿对细胞的主要影响因素是什么(培养皿,封口膜,蛋白,培养液)] 紧急求助：用封口膜封培养皿对细胞的主要影响因素是什么我们研究某种蛋白的表达，在实验设计分组中，有一组的培养皿用封口膜封30分钟，导致蛋白表达显著下调。这有点出乎我们的意料。封口膜封培养皿的影响因素有哪些？低氧？细胞在30分钟内会消耗很多氧气吗？PH变化? 培养液颜色变化不明显。请大家多多指教。谢谢 关键词:[培养皿 封口膜 蛋白 培养液 蛋白表达 实验设计]…
紧急求助：用封培养皿对细胞的主要影响因素是什么我们研究某种蛋白的表达，在实验设计分组中，有一组的培养皿用封30分钟，导致蛋白表达显著下调。这有点出乎我们的意料。封口膜封培养皿的影响因素有哪些？低氧？细胞在30分钟内会消耗很多氧气吗？PH变化? 培养液颜色变化不明显。请大家多多指教。谢谢
回复有没有其他的因素呢有没有严格的平行做的呢？我的感觉应该是细胞处于低氧的情况下，诱导细胞代谢的变化，就是走产酸的途径，大量产酸同时细胞获得的能量也大大减低，所以观察感觉pH变化不大，但是事实上细胞的能量大减，蛋白产生按照规律应该只有1/3-1/5。回复谢谢楼上wujob2006朋友的解答。有没有其他的因素呢？有没有严格的平行做的呢？---------------------------------------------同一代细胞，同时铺板，一块培养，只是多一个parafilm封口膜封闭。我们一开始也认为是低氧造成的，但是又考虑到密封30分钟是否会导致细胞低氧，细胞耗氧量有多大，没有查到这方面的数据，所以很困惑。如果这样处理细胞处于低氧状态，那是否可以用1%低氧处理半小时来代替封口膜封口。回复我也奇怪的就是细胞一旦走了低氧代谢后就好像不是很容易回到正常的代谢的途径上。这个事情我也在考虑。回复我个人认为是细胞却二氧化碳造成的回复我个人认为是细胞却二氧化碳造成的
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